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多重荧光免疫组化检测

更新时间:2024-05-28

简要描述:

多重荧光免疫组化(mIHC)的主要技术原理源自酪酰胺信号放大(TSA)技术。TSA是一种利用辣根过氧化酶(HRP)对靶蛋白或核酸进行高密度原位标记的酶学检测方法。该技术利用酪胺Tyramide的过氧化物酶反应,在抗原-抗体结合部位产生大量的酶促产物。这些产物与周围的蛋白残基结合,进而与荧光基团结合,使得检测信号得到几何级放大。这种技术可与高性能染料如Alexa Fluor、传统荧光染料等相兼容,实现多重荧光标记。

   多重荧光免疫组化(mIHC)的主要技术原理源自酪酰胺信号放大(TSA)技术。TSA是一种利用辣根过氧化酶(HRP)对靶蛋白或核酸进行高密度原位标记的酶学检测方法。该技术利用酪胺Tyramide的过氧化物酶反应,在抗原-抗体结合部位产生大量的酶促产物。这些产物与周围的蛋白残基结合,进而与荧光基团结合,使得检测信号得到几何级放大。这种技术可与高性能染料如Alexa Fluor、传统荧光染料等相兼容,实现多重荧光标记。

  多重荧光免疫组化技术广泛应用于多个领域:

  单细胞分析:能够在单个细胞水平上同时检测多种蛋白质的表达。

  芯片分析:在生物芯片上实现高通量的多重蛋白质检测。

  组织形态和功能分析:研究组织中不同蛋白质的空间分布和相互关系。

  肿瘤微环境分析:全景式地分析肿瘤免疫浸润、免疫检查点、肿瘤细胞与免疫细胞的空间关系等。

  自身免疫疾病分析:探究自身免疫疾病的发病机制和病程进展。

  排异反应评估:监测和评估后的免疫排异反应。

  多重荧光免疫组化检测的大致步骤如下:

  取样:获取待检测的组织样本,通常采用切片方法。

  固定处理:用甲醛或乙醇等物质对组织样本进行固定,以保持其形态结构。

  切片处理:将固定后的组织切成薄片,通常厚度为4-5微米。

  抗体标记:选择特定的抗体对目标蛋白质进行标记,这些抗体通常与荧光素或酶等物质结合。

  TSA放大:利用TSA技术进行信号放大,使荧光素在抗原-抗体结合部位大量沉积。

  染色处理:通过荧光染色方法将标记的抗体与特定的组织细胞结合。

  图像采集与分析:使用荧光显微镜或共聚焦显微镜采集图像,并进行定量和定性分析。

  多重荧光免疫组化的图像分析方法包括:

  定性分析:通过观察荧光信号的分布和强度,判断目标蛋白质在组织中的表达和定位。

  定量分析:利用图像处理软件对荧光信号进行量化,比较不同样本或不同条件下的蛋白质表达差异。

  共定位分析:分析不同荧光信号之间的空间关系,探究蛋白质之间的相互作用和共定位情况。

  通过这些分析方法,多重荧光免疫组化技术能够提供丰富的生物学信息,有助于深入理解细胞的生理和病理过程。

 

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