荧光定量Q-PCR检测是利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化，通过Ct值和标准曲线的关系对起始模板进行定量分析。

　　它的扩增曲线反应了Q-PCR动态进程的曲线。

　　荧光阈值：前15个循环信号作为荧光本底信号，荧光阈值的默认设置是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍，如果手动设置则设置大于荧光背景值和阴性对照的荧光高值，进入指数期的初阶段。

　　CT值：PCR扩增过程中，扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数。

　　Q-pcr的取样及运输事项：

　　一、细胞收集及保存

　　1.贴壁细胞胰酶消化后900转5min离心至管底（非贴壁细胞直接离心），弃上清，将细胞冻存与-80度长期保存，-20度，暂时保存。若用于Q-PCR尽量使用灭菌无RNA酶离心管，RNA样本保存液中-80度长期保存。

　　2.组织样本取样后立即-80或者液氮保存。后续用于Q-PCR的取样后立即存于液氮或者-80度环境中，或者放于有RNA样本保存液的灭菌无RNA酶离心管中-80度保存。

　　二、样本运输

　　短时2h左右冰袋或者液氮运输，干冰（干冰可以维持-70度）密封运输。

　　三、样本编号

　　样本标号清晰，须提供样本清单。

　　病理实验取样及实验注意事项：

　　1.动物组织提取后（玉米粒大小即可）迅速保存于4%多聚甲醛中固定，管体标号，组织块尽量少带血液，或可以用多聚甲醛将样本稍作清洗，常温保存，常温运输。做电镜的样本由2.5%戊二醛固定于15ml离心管内，样本直径小于2mm，常温保存常温运输。

　　2.细胞样本制作成爬片后PBS浸润保存与细胞培养板内，密封常温运输。做电镜的细胞离心收集好后2.5%戊二醛固定，常温运输。